腫瘤模型之小鼠模型介紹及構建、傳代、試驗等細胞詳細講解
發布時間：
2022-02-14
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腫瘤模型(推薦閱讀：嚙齒動物腫瘤模型)我們一般常用的就是小鼠模型（推薦閱讀：同源小鼠腫瘤模型）和人腫瘤裸小鼠移植瘤模型。其中用得最多的是皮下模型，另外還有腹水（或者尾靜脈注射）以及原位模型，其他的模型很少用，就不提他們了?！ ⌒∈竽Ｐ头秩箢悾?br />
第一類是以S180、EAC、H22等為代表的，他們的宿主小鼠多選用KM，可產生腹水，也可在皮下成瘤。
多以腹水傳代，實驗時抽取腹水，經過一定稀釋后皮下接種構建模型，接踵后第二天開始給藥，給藥7到10天，接種10天后結束試驗，剝取腫瘤稱瘤重。
1. 關于構建瘤種
可以用體外細胞株培養后，用PBS懸浮至1~3×106/0.1ml/mouse，i.p接種即可，最好用6號左右的針頭，就是常用的2ml一次性注射的針頭。
2. 關于腹水傳代
觀察到第一代的種鼠肚子較大后（一般約8~9天左右），可以傳代，傳代時取1ml注射器，用2ml注射器的針頭，種鼠腹部消毒后直接將針頭插入抽取腹水即可，注意不要把針頭插得很深，盡量淺一點，還可以把老鼠拎起來，利用重力，讓腹水集中在某處便于抽取，一般抽個0.5ml就可以了，不用離心。
直接用PBS3~6倍稀釋后，接種到新的老鼠腹腔，腹水顏色為白色或者略有發黃都是正常的，但是血性腹水說明不好，需要注意調整，第二代以后，盡量6~7天的時候傳代，不要等的時間太久，否則腹水容易血性。三代后可用于試驗。
3. 關于接種進行試驗
這個時候抽取的腹水需要量比較多，一般需要處死種鼠后，小心地用消毒眼科剪刀鑷子剝開腹部皮膚，注意不要弄破肌肉，然后，用鑷子（最好是哪種前面有倒勾的鑷子，學名好像是唇型鑷）拎起腹部的肌肉，用剪刀剪開一個小口，然后用玻璃滴管或者去掉針頭的注射器吸取腹水。
然后進過一定的稀釋后，接種到小鼠的腋下。關于稀釋量，各個實驗室的情況都不一樣，最好摸索一下，開始的時候可以適當的計數，但是要用臺盼蘭染色后計活細胞數。接種部位在小鼠腋下，但是不要深入到腋窩里面，會給以后的操作帶來麻煩。接種時的進針處離接種處遠一點，讓針頭在皮下多走一段，不容易污染。
有的人接種的時候喜歡針頭向上用力，緊貼著表皮往里走，然后注射的時候感覺阻力較大，打出來的皮丘又緊又圓，這樣的接種，會使腫瘤與皮膚嚴重粘連，不利于最后腫瘤的剝取。也不要緊靠肌肉，腫瘤會與肌肉嚴重粘連。應該在兩者之間，進針的感覺輕松自如，針頭很自由，雖然打出來的腫瘤不會很圓很漂亮，但是相對好剝取一些。
4. 關于觀測指標
主要是按時稱體重，試驗結束后剝取腫瘤稱瘤重。因為出瘤已經是接種后的第6天左右了，第10天就結束時間，瘤體積的數據意義就不大。小鼠腫瘤很難剝，這是沒有辦法的，只能耐心，沒有太好的辦法，剝多了以后，手上會掌握一些巧力，有一些幫助，但是我們還是很頭痛小鼠腫瘤試驗結束。腫瘤組織周圍經常會有一些血竇的形成，弄破后會有血和黃色的液體流出，正常的，但是剝瘤子的時候不要把它弄破，會嚴重影響瘤重。按照SFDA的規定，平均瘤重小于1g，或者單個瘤重小于200mg，認為腫瘤生長不良，試驗作廢。
小鼠模型第二類是以lewis肺癌、B16為代表的，他們的宿主多為C57。
不產生腹水，只能皮下生長。多用插塊法或者勻漿法傳代和接種做試驗。有一種做法也是接種后第二天開始給藥，還有一種做法是接種三天后給藥，接種后兩周結束試驗，剝取腫瘤稱重。
1. 關于瘤種構建
體外細胞株，培養后PBS懸浮至1~3×106/0.1ml/site，接種至小鼠腋下，即可。
2. 關于傳代與接種
剝取腫瘤，在PBS中取出腫瘤表面包膜和中心的壞死部分，剪刀剪成小塊，小塊大小以套管針的針口為標準。用鑷子將小塊從針頭處塞進18~20號的套管針，接種至小鼠腋下，用套管針中間的實體針將瘤塊推出即可。
還可以在上述腫瘤組織剪成小塊后，用玻璃勻漿器勻漿后，200目篩網過濾，收集濾液，活細胞計數，PBS稀釋后用注射器接種，稀釋量也需要各個實驗室自己摸索。
也是三代后可用于試驗。
3. 關于觀測指標
可以在出瘤后測量瘤體積，但是主要還是考察瘤重。
小鼠模型第三類是以P388、L1210為代表的白血病模型。
宿主為DBA2，也有人用C57與DBA2的F1代傳代，DBA2用于試驗，但是我們兩種宿主都傳過代，沒有發現有什么區別。他們能形成腹水，一般不用于皮下接種試驗，平時多用腹水傳代，實驗時多用腹腔接種或尾靜脈接種考察生存時間。也是接種后第二天開始給藥。
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